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Institut Jacques Monod
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Sylvain Brun

GFP-tagged male nucleus moving from right to left and stretching while passing by septal pore; nuclear membranes are tagged with the mCherry

 

2003 : thèse : Etude du rôle des protéines de la famille Bcl-2 dans le contrôle de l’apoptose chez D. melanogaster. Laboratoire LGBC de l’université Versailles-Saint-Quentin-en-Yvelines sous la co-direction des Pr. B. Mignotte et I. Guénal.

2003-2005 : stage post-doctoral: Recherche de nouveaux mutants de la réponse immunitaire chez D. melanogaster. Equipe Interactions hôte-pathogènes chez la drosophile (B. Lemaitre) CGM/I2BC, CNRS, Gif‑sur‑Yvette.

2005-2007 : stage post-doctoral : Etude du Médiateur de la transcription chez S. cerevisiae, SBGM/I2BC (M. Werner), CEA, Saclay.

2007-2021: au sein de l’équipe Génétique et Epigénétique des Champignons (dirigée par le Pr. P. Silar) dans laquelle j’ai été nommé Maître de Conférences, j’ai principalement étudié le rôle du complexe NADPH oxydase dans la régulation de plusieurs aspects de la physiologie et du cycle de vie du champignon filamenteux ascomycète Podospora anserina comme la germination des ascospores, la défense (contre les autres champignons), la pénétration de la cellulose par les champignons et la reproduction sexuée. C’est en 2016 que je me suis spécialisé dans l’étude de la biologie cellulaire de la reproduction sexuée chez les champignons (Neurospora crassa et Podospora anserina), et plus particulièrement dans l’étude du mouvement des noyaux au cours de ce processus lors d’un voyage sabbatique à l’université de Manchester dans le laboratoire du Pr. Nick Read (Manchester Fungal Infection Group-MFIG). En 2017 j’ai obtenu mon HDR à l’université Paris Cité.

En janvier 2022, j’ai rejoint l’équipe Polarité et Morphogénèse au sein de laquelle j’étudie le mouvement des noyaux, leur déformation et le cytosquelette qui sous-tend ces mouvements au cours de la reproduction sexuée chez le champignon filamenteux ascomycète modèle Podospora anserina.

 

La mécanotransduction des signaux ou comment des stress mécaniques exercés sur la cellule et en particulier sur le noyau contrôlent l’expression des gènes est une thématique en pleine essor, notamment concernant les noyaux des cellules métastatiques qui se déforment pour migrer à travers les tissus et un nombre croissant de pathologies s’avère provenir d’un problème de mécanotransduction ou de positionnement du noyau.

Au cours de la reproduction sexuée chez Podospora anserina, un champignon filamenteux ascomycète modèle, les noyaux mâles et femelles ne fusionnent pas immédiatement après la plasmogamie mais les noyaux mâles migrent le long du trichogyne (la cellule femelle), se déformant en franchissant les pores septaux des compartiments successifs composant le trichogyne (Viron et al., 2025 ; DOI :10.1101/2025.06.08.658251). Au cours de leur migration, les noyaux mâles s’étirent de manière spectaculaire (jusqu’à 12 fois leur taille) et atteignent des vitesses jamais mesurées dans aucun autre organisme, jusqu’à 135 µm/min. Nous avons récemment montré que le mouvement et la déformation des noyaux mâles dépend du réseau de microtubules polarisé dans les trichogynes.

Afin de comprendre ces mouvements d’une rare rapidité et caractériser comment le noyau fongique tolère des déformations extrêmes sans casser, nos études se concentrent sur les moteurs moléculaires associés aux microtubules et les composants du noyau comme le complexe LINC pouvant réguler ces mouvements et ces déformations extrêmes.

 

Co-porteur

  • 2023-2025 IDEX Emergence UPCité projet MOVEFORFUN (S. Dmitrieff, IJM)
  • 2021-2023  IDEX Emergence UPCité projet NUDE (F. Bernard, IJM)
  • 2014-2016 PHC CEDRE Franco-libanais (Z. Kambris, AUB, Liban)

Participant

  • 2022 & 2023 MITI-CNRS ; porteur Y. Sivry
  • 2021-2023 SPE INRAE; porteur T.S. NGuyen projet ARSEN
  • 2019-2022: IDEX UPCité -Centre des Politiques de la Terre ; co-porteurs P. Grouiez & G. Ruprich-Robert Meth’InTerE

 

Internes : Virginie Courtier-Orgogozo, équipe Evolution et Génétique ; Serge Dmitrieff, équipe Organisation Spatiale de la Cellule.

Externes:

Présent :

  • Pr. F. Malagnac (I2BC, CNRS-UNIVERSITÉ Paris-Saclay)
  • Pr. L. Peraza-reyes (UNAM, Mexico)
  • D. Tharreau (CIRAD, Montpellier)
  • TS. Nguyen (INRAE BIOGER)
  • J.G Berrin (INRAE, UNIVERSITÉ Marseille 2)
  • Pr. Z. Kambris (Université Américaine de Beyrouth)

Passé :

  • Pr. N. Read (Université de Manchester)
  • Pr. P. Tudzynski (Université de Münster)
  • R. Debuchy (I2BC, CNRS-UNIVERSITÉ Paris-Saclay)

 

Thèse :

  • Alexander Demoor (2017-2021)

Master 2 :

  • Zoé Kachaner (2025)
  • Marie-Caroline Viron (2024)
  • Alexander Demoor (2017)
  • Isabelle Lacaze (2012)
  • Charlène Girodet (2011)

Master 1:

  • L. Mayer (2025)
  • Z. Kachaner (2024)
  • M-C. Viron (2023)
  • T. Bizeau (2022)
  • M. Ryckner (2021)
  • S. Castro (2019)
  • A. Mercier (2015)
  • C. Boucher (2015)

Bachelor (L3):

  • A. Mercier (2014)
  • C. Clairet (2014)
  • M. Ducy (2011)

 

Maitre de Conférences de l’Université Paris Cité Hors-Classe, enseignant en génétique, microbiologie eucaryote & mycologie.

Co-responsable du domaine génétique ; membre du jury de sélection et co-responsable du parcours microbiologie du M1 BMC UP Cité.

Co-responsable des UEs de génétique du L3 Biosciences & L3 Pro MIB, de l’UE de microbiologie du L3 Biosciences & de l’UE de biologie des champignons du L2 SDV/L3 SVT.

Représentant élu rang B au conseil d’administration de l’UFR Sciences Du Vivant d’UP Cité.

 

  • Articles originaux :
  1. Viron, M-C., Kachaner Z., Grognet P., Lalanne C., Guichet A., Brun S. (2025) BioRiX en révision Preprint at https://doi.org/10.1101/2025.06.08.658251 The fastest movements and the most extreme deformations of the cell nucleus are driven by microtrubules in the model fungus Podospora anserina – auteur pour correspondance
  2. Guyot, L., Chahine, E., Filippo, E.D., Lalanne, C., Brun, S., Hartmann, F.E., and Giraud, T. (2025) Journal of Evolutionary Biology 38, 1256–1271. Sheltered load in fungal mating-type chromosomes revealed by fitness experiments
  3. Demoor, A., Lacaze, I., Ferrari R., Lalanne C., Silar, P., and Brun, S. (2023) Microbiology Spectrum. The GUN mutants: new weapons to unravel ascospore germination regulation in the model fungus Podospora anserina -auteur pour correspondance
  4. Lassagne, A., Brun, S., Malagnac, F., Adreit, H., Milazzo, J., Fournier, E., and Tharreau, D. (2022) Environmental Microbiology. Male fertility in Pyricularia oryzae: Microconidia are spermatia
  5. Brun, S., Kuo, H.-C., Jeffree, C.E., Thomson, D.D., and Read, N. (2021) Microbiology Spectrum 0, e00335-21. 10.1128/Spectrum.00335-21. Courtship Ritual of Male and Female Nuclei during Fertilization in Neurospora crassa -auteur pour correspondance
  6. Mercier, A., Clairet, C., Debuchy, R., Morais, D., Silar, P., and Brun, S. (2019) Fungal Genet. Biol. 132, 103257. The mitochondrial translocase of the inner membrane PaTim54 is involved in defense response and longevity in Podospora anserina – auteur pour correspondance
  7. Demoor, A., Silar, P., and Brun, S. (2019) Fungi Basel Switz. 5. Appressorium: The Breakthrough in Dikarya – auteur pour correspondance
  8. Ferrari R., Lacaze I., Le Faouder P., Bertrand-Michel J., Oger C., Galano JM., Durand T., Moularat S., Chan Ho Tong L.1, Boucher C.1, Kilani J., Petit Y., Vanparis O., Trannoy C., Brun S., Lalucque H., Malagnac F., Silar P. (2018) Biophys. Acta BBA – Gen. Subj. 1862, 2174–2182. Cyclooxygenases and lipoxygenases are used by the fungus Podospora anserina to repel nematodes
  9. Xie N., Ruprich-Robert G., Chapeland-Leclerc F., Coppin E, Lalucque H, Brun S., Debuchy R. and Silar.P (2017) Biol. 429,1, 285-305. Inositol-phosphate signaling as mediator for growth and sexual reproduction in Podospora anserina
  10. Jaber, S., Mercier, A., Knio, K., Brun, S. and Kambris, Z. (2016). Vectors 9, 491. Isolation of fungi from dead arthropods and identification of a new mosquito natural pathogen – co-dernier auteur et auteur pour correspondance
  11. Lacaze I., Lalucque H., Siegmund U., Silar P., and Brun S. (2015), Molecular Microbiology March; 95(6):1006-1024. Identification of NoxD/Pro41 as the homologue of the p22phox NADPH oxidase subunit in fungi – auteur pour correspondance
  12. Aït Benkhali J., Coppin E., Brun S., Peraza-Reyes L., Martin T., Dixelius C., Lazar N., Van Tilbeurg H., Debuchy R. (2013), PLoS Genetics, July, 9(7), e1003642. A Network of HMG-box Transcription Factors Regulates Sexual Cycle in the Fungus Podospora anserina
  13. Coppin E., Berteaux-Lecellier V., Bidard F., Brun S., Ruprich-Robert G., Espagne E., Aït-Benkhali J., Goarin A., Neisser A., Planamente S., Debuchy R., Silar P. (2012), PLoS One, May, 7(5). Systematic deletion of homeobox genes in Podospora anserina uncovers their roles in shaping the fruiting body
  14. Lalucque H., Malagnac F., Brun S., Kicka S., Silar P. (2012), Genetics, Jun; 191(2), 419-433. A non-mendelian MAPK-generated hereditary unit controlled by a second MAPK pathway in Podospora anserina
  15. Brun S., Malagnac., Bidard F., Lalucque H., Silar P., (2009), Molecular Microbiology, Oct;74(2):480-496. Functions and regulation of the Nox family in the filamentous fungus Podospora anserina: a new role in cellulose degradation
  16. Malagnac F., Bidard F., Lalucque H., Brun S., Lambou K., Lebrun MH., Silar P., (2008), Integr. Biol., 1(2):180-181. Convergent evolution of morphogenetic processes in fungi: Role of tetraspanins and NADPH oxidase 2 in plant pathogens and saprobes
  17. Esnault C., Ghavi-helm Y., Brun S., Soutourina J., Van Berkum N., Boschiero C., Holstege F., Werner M. (2008), Molecular Cell, Aug 8;31(3):337-346. Mediator-dependent recruitment of TFIIH modules in preinititation complex
  18. Brun S., Kambris Z., Jang IH., Nam HJ., Roméo Y., Takahashi K., Lee WJ., Ueda R., Lemaitre B. (2006), Current Biology, Apr 18;16(8):808-813. A large-scale in vivo RNAi screen identifies five new serine proteases required for Toll activation during the Drosophila immune response
  19. Brun S., Vidal, S., Spellmann, P., Takahashi, K., Tricoire, H., and Lemaitre, B. (2006), Genes to Cells, Apr;11(4), 397-407. The MAPKKK Mekk1 regulates the expression of turandot stress genes in response to injury in Drosophila
  20. Jang IH., Chosa N., Kim SH., Nam HJ., Lemaitre B., Ochiai M., Kambris Z., Brun S., Hashimoto C., Ashida M., Brey PT., Lee WJ. (2006), Developmental Cell, Jan;10(1):45-55. A Spatzle-processing enzyme required for Toll signaling activation in Drosophila innate immunity
  21. Brun S., Rincheval-Arnold A., Colin J., Risler Y., Mignotte B. et Guenal I (2006), Cell Death and Differentiation, Oct;13(10):1752-1762. The myb-related gene stonewall induces both hyperplasia and cell death in Drosophila: rescue of fly lethality by coexpression of apoptosis inducers
  22. Brun S., Rincheval V., Gaumer S., Mignotte B., and Guénal I. (2002), Oncogene, Sep 19;21(42), 6458-6470. reaper and bax initiate two different apoptotic pathways affecting mitochondria and antagonized by bcl-2 in Drosophila
  23. Gaumer S., Guénal I., Brun S., Théodore L., and Mignotte B. (2000), Cell Death and Differentiation, Sep;7(9), 804-814. Bcl-2 and Bax mammalian regulators of apoptosis are functional in Drosophila
  • Articles de revues
  1. Couturier, M., Tangthirasunun, N., Ning, X., Brun, S., Gautier, V., Bennati-Granier, C., Silar, P., and Berrin, J.-G. (2016). Adv. 34, 976–983. Plant biomass degrading ability of the coprophilic ascomycete fungus Podospora anserina
  2. Gaumer S., Guénal I., Brun S. and Mignotte B. (2002), Médecine Sciences. 18, 875‑880. L’apoptose chez la drosophile : conformisme et originalité
  • Chapitres d’ouvrages
  1. Peraza-Reyes, L., Brun S., Grognet P., Malagnac F. The Mycota, Chapter 13 in press Sexual development in Fungi
  2. Brun S. & Silar P. (2010), Evolutionary Biology – Concepts, Molecular and Morphological Evolution. pp. 317-328. Convergent evolution of morphogenetic processes in fungi
  3. Mignotte, B., Colin, J., Brun, S., and Guénal, I. (2005). Apoptosis: the fly point of view. In Apoptosis, (India: Kerala), ISBN 81-308-0021-7