Institut Jacques Monod
Close

ImagoSeine

Cytométrie en flux, microscopie photonique, microscopie électronique, analyse d’images

 

Site de réservation

Offre de services

PRÉSENTATION 

 

ImagoSeine est la plateforme de service et de R&D (Recherches & Développement) en imagerie de l’Institut Jacques Monod.

ImagoSeine est membre de l’infrastructure nationale de recherche dédiée à l’imagerie biologique  France-BioImaging et de l’infrastructure européenne Euro-BioImaging.

Elle propose et développe des prestations de haut niveau permettant la visualisation et l’analyse de la structure, de la dynamique, des interactions et des fonctions des échantillons biologiques.

Pour ce faire, la plateforme ImagoSeine de l’Institut Jacques Monod réunit en un même lieu des ressources en cytométrie en flux, microscopie électronique et microscopie photonique.

  • La cytométrie en flux permet l’analyse qualitative et quantitative multiparamétrique et multi-couleurs, ainsi que le tri de cellules à haut débit, basés sur la taille, la granulosité, et l’intensité de fluorescence d’éléments en suspension.
  • La microscopie électronique permet l’analyse ultrastructurale de la cellule et de ses composants. Elle comprend la microscopie à transmission et la préparation des échantillons à température ambiante ou à basse température.
  • La microscopie photonique permet la visualisation et l’analyse de la structure et de processus dynamiques au niveau cellulaire (procaryotes et eucaryotes) et tissulaire. Elle propose des expertises et des équipements innovants, permettant des observations de la molécule unique jusqu’à l’échelle d’un organisme.

La plateforme ImagoSeine de l’Institut Jacques Monod est ouverte à l’ensemble de la communauté scientifique nationale et internationale, publique et privée.

ImagoSeine bénéficie du soutien des organismes suivants :

MISSIONS 

 

Nous sommes une équipe d’ingénieurs, provenant de disciplines différentes (biologie, physique, informatique), travaillant sur l’interface de la microscopie avec la biologie. Nous proposons :

  • l’orientation des utilisateurs vers l’équipement le plus adapté à leur projet.
  • l’aide à la conception des outils : biologie moléculaire, étiquetage des protéines, choix des marquages et des fluorophores, protocoles d’analyse …
  • l’aide à la mise en place de l’expérience : définition des contrôles, des modes opératoires, des précautions à prendre vis-à-vis des artefacts potentiels.
  • l’encadrement éventuel des utilisateurs pour la réalisation des expériences,
  • la mise à disposition d’équipements fonctinnels et calibrés.
  • la formation des utilisateurs pour une utilisation autonome des équipements.
  • la prise en charge des acquisitions pour les utilisateurs non autonomes.
  • l’aide au traitement et à l’analyse des données obtenues.
  • l’aide à l’interprétation et présentation des résultats.

 

PRESTATIONS 

 

La plateforme d’imagerie ImagoSeine propose 3 types de prestations en microscopie photonique, cytométrie et microscopie électronique :

1 – l’utilisation autonome des équipements et des réactifs

L’utilisateur autonome est préalablement formé par le personnel de la plateforme sur certains équipements ou pour la réalisation de certaines opérations (voir Formation). Il bénéficie de plages horaires d’utilisation étendues (voir Horaires d’accès) et de tarifs adaptés (tarif autonome). Pendant les sessions réservées en autonomie (voir Réservation), les ingénieurs de la plateforme peuvent être sollicités pour des questions ponctuelles, ou en cas de problèmes techniques (dysfonctionnements ou défauts du matériel), aux horaires d’ouverture normale de la plateforme en fonction de leur disponibilité. En cas de besoin, l’utilisateur autonome peut réserver une session avec assistance (conseil, formation approfondie). L’utilisateur autonome est responsable de la qualité et de la gestion des résultats qu’il a obtenus. Un “cahier de suivi des séances”, situé à côté de chaque appareil, doit être rempli à chaque séance. Des documents (manuel d’utilisation, tutoriaux, …) sont mis à la disposition des utilisateurs et peuvent être consultés sur place. Pendant la prestation, l’utilisateur autonome est responsable du matériel mis à sa disposition. Il doit suivre les règles de mise en service, d’utilisation, de fermeture et de rangement des équipements et des réactifs utilisés.  Le responsable d’équipe s’engage à payer la totalité des frais de réparation en cas de dommage lié à une mauvaise utilisation d’un équipement. Tout utilisateur autonome qui n’aurait pas utilisé un équipement depuis plus d’un an ou bien depuis la mise à jour d’un équipement (matériel, logiciel) devra suivre une formation complémentaire. Le statut d’utilisateur autonome est soumis à l’appréciation du personnel de la plateforme et peut être revu sans préavis. Un utilisateur autonome ne peut en aucun cas former un autre utilisateur.

2 – la session avec assistance

La session avec assistance est conduite en présence du personnel de la plateforme. Elle est proposée dans le cadre de la mise en œuvre de protocoles connus dans des conditions expérimentales standard, décidées avec l’utilisateur, et n’a pas de caractère inventif. Les ingénieurs de la plateforme impliqués se portent garants de la qualité des résultats, sous réserve que l’utilisation soit faite selon leurs recommandations, dans les conditions fixées en accord avec l’utilisateur. La session avec assistance fait l’objet d’une réservation préalable (voir Réservation), selon la disponibilité des équipements et des ingénieurs de la plateforme et uniquement pendant la plage horaire d’ouverture normale (voir Horaires d’accès). Elle fait l’objet de la tarification « assistée ».

3 – le projet collaboratif

Il s’agit du cas où le projet de l’utilisateur nécessite l’accompagnement d’un ou de plusieurs ingénieurs de la plateforme pour de l’assistance ponctuelle ou régulière ou pour le développement d’une technique ou d’une technologie pour les applications de l’utilisateur, ou d’un protocole d’acquisition ou de traitement des données. Les ingénieurs de la plateforme impliqués dans le projet se portent garants de la qualité des résultats obtenus et de leur restitution (échantillons, données). Les étapes d’un projet, peuvent être réalisées en présence ou en absence de l’utilisateur en fonction de ce qui a été décidé préalablement entre l’utilisateur et les ingénieurs impliqués. Dans le second cas elles ne font pas l’objet d’une réservation particulière. La facturation de projet peut être soumise à une tarification particulière, sur la base d’un devis, selon les équipements utilisés pour le projet. La facturation prendra en compte les heures réellement utilisées. Le tarif appliqué sera le tarif « utilisateurs assistés ».

Contacts

COORDINATION GÉNÉRALE D’IMAGOSEINE 

 

René-Marc Mège – +33 (0)157278067 – rene-marc.mege@ijm.fr

Jean-Marc Verbavatz – +33 (0)157278004 – jean-marc.verbavatz@ijm.fr

Cytométrie en flux : cytometrie@ijm.fr

Microscopie électronique :  microscopie.electronique@ijm.fr

Microscopie photonique : microscopie.photonique@ijm.fr

Membres de la plateforme ImagoSeine :

Nicolas VALENTIN Ingénieur, Responsable de la cytométrie en flux
Rémi LE BORGNE Ingénieur, Responsable de la microscopie électronique
Catherine DURIEU Ingénieure en microscopie électronique
Xavier BAUDIN Ingénieur, Responsable de la microscopie photonique
Nicolas MOISAN Ingénieur de recherche en microscopie photonique
Thomas RIOS Ingénieur en microscopie photonique
Romain NAILLON

Accès à la plateforme

La marche à suivre

 

1) Contactez-nous par mail afin de fixer un rendez-vous avec notre équipe.
Cytométrie en flux : cytometrie@ijm.fr
Microscopie électronique : microscopie.electronique@ijm.fr
Microscopie photonique : microcopie.photonique@ijm.fr

2) Lors de ce rendez-vous il est nécessaire que le responsable du projet soit présent et que vous nous fournissiez les informations importantes (but de l’expérience, type d’échantillons, marqueurs, support…).
Il sera décidé si votre projet nécessite une collaboration, une prestation ou une formation à l’un des appareils.

3) Inscrivez-vous sur le site de réservation de la plateforme.
Vous devez disposer d’une adresse mail professionnelle valide. Une fois vos informations validées par la plateforme, votre identifiant (prénom.nom) sera activé pour vous connecter.

4) Créez votre mot de passe de connexion au site de réservation sur cette page. Une fois connecté, téléchargez la charte, imprimez et signez la dernière page.

 

Utilisation des équipements et prestations  

Uniquement après réception de la charte signée, les prestations pouuront avoir lieu. Faites les demandes de formation des équipements et les demande de projet en collaboration une fois connecté sur le site de réservation dans l’onglet « Request ».

Charte à télécharger sur le site de réservation

Facturation

L’utilisation des équipements de la plateforme est payante (Voir nos tarifs ci-dessous). Les tarifs sont calculés de façon à couvrir l’entretien et la mise à jour des équipements de la plateforme.
Un relevé détaillé des prestations effectuées vous sera envoyée chaque mois. Vous devrez en retour envoyer un bon de commande au service comptabilité de l’institut.

 

Frais d’utilisation de la cytométrie en flux ImagoSeine

Frais d’utilisation de la microscopie photonique ImagoSeine

Pour les expériences longues, le prix est divisé par deux entre 20h et 9h et pendant le week-end.

Frais d’utilisation de la microscopie électronique ImagoSeine

 

Publications

PUBLICATIONS COSIGNÉES PAR LES MEMBRES D’IMAGOSEINE (2017-2022)

 

  1. Zaaboub, R.; Vimeux, L.; Contremoulins, V.; Cymbalista, F.; Lévy, V.; Donnadieu, E.; Varin-Blank, N.; Martin, A.; Dondi, E. Nurselike Cells Sequester B Cells in Disorganized Lymph Nodes in Chronic Lymphocytic Leukemia via Alternative Production of CCL21. Blood Adv 2022, 6 (16), 4691–4704. doi: 10.1182/bloodadvances.2021006169. PMID: 35679464.
  2. Lachat, J.; Pascault, A.; Thibaut, D.; Le Borgne, R.; Verbavatz, J.-M.; Weiner, A. Trans-Cellular Tunnels Induced by the Fungal Pathogen Candida Albicans Facilitate Invasion through Successive Epithelial Cells without Host Damage. Nat Commun 2022, 13 (1), 3781. doi: 10.1038/s41467-022-31237-z. PMID: 35773250.
  3. Fernandes, P.; Loubens, M.; Le Borgne, R.; Marinach, C.; Ardin, B.; Briquet, S.; Vincensini, L.; Hamada, S.; Hoareau-Coudert, B.; Verbavatz, J.-M.; Weiner, A.; Silvie, O. The AMA1-RON Complex Drives Plasmodium Sporozoite Invasion in the Mosquito and Mammalian Hosts. PLoS Pathog 2022, 18 (6), e1010643. doi: 10.1371/journal.ppat.1010643. PMID: 35731833.
  4. Gaudin, N.; Martin Gil, P.; Boumendjel, M.; Ershov, D.; Pioche-Durieu, C.; Bouix, M.; Delobelle, Q.; Maniscalco, L.; Phan, T. B. N.; Heyer, V.; Reina-San-Martin, B.; Azimzadeh, J. Evolutionary Conservation of Centriole Rotational Asymmetry in the Human Centrosome. Elife 2022, 11, e72382. doi: 10.7554/eLife.72382. PMID: 35319462.
  5. Sonam, S.; Balasubramaniam, L.; Lin, S.-Z.; Ivan, Y. M. Y.; Jaumà, I. P.; Jebane, C.; Karnat, M.; Toyama, Y.; Marcq, P.; Prost, J.; Mège, R.-M.; Rupprecht, J.-F.; Ladoux, B. Mechanical Stress Driven by Rigidity Sensing Governs Epithelial Stability. bioRxiv March 12, 2022, p 2022.03.10.483785. doi: 10.1101/2022.03.10.483785.
  6. Deshayes, F.; Fradet, M.; Kaminski, S.; Viguier, M.; Frippiat, J.-P.; Ghislin, S. Link between the EZH2 Noncanonical Pathway and Microtubule Organization Center Polarization during Early T Lymphopoiesis. Sci Rep 2022, 12 (1), 3655. doi: 10.1038/s41598-022-07684-5. PMID: 35256668.
  7. Xi, W.; Saleh, J.; Yamada, A.; Tomba, C.; Mercier, B.; Janel, S.; Dang, T.; Soleilhac, M.; Djemat, A.; Wu, H.; Romagnolo, B.; Lafont, F.; Mège, R.-M.; Chen, Y.; Delacour, D. Modulation of Designer Biomimetic Matrices for Optimized Differentiated Intestinal Epithelial Cultures. Biomaterials 2022, 282, 121380. doi: 10.1016/j.biomaterials.2022.121380. PMID: 35101742.
  8. Xie, J.; Najafi, J.; Le Borgne, R.; Verbavatz, J.-M.; Durieu, C.; Sallé, J.; Minc, N. Contribution of Cytoplasm Viscoelastic Properties to Mitotic Spindle Positioning. Proc Natl Acad Sci U S A 2022, 119 (8), e2115593119. doi: 10.1073/pnas.2115593119. PMID: 35169074.
  9. Gonçalves-Antunes, M.; Sanial, M.; Contremoulins, V.; Carvalho, S.; Plessis, A.; Bécam, et I. High Hedgehog Signaling Is Transduced by a Multikinase-Dependent Switch Controling the Apico-Basal Distribution of the GPCR Smoothened; preprint; Developmental Biology, 2022. doi: 10.1101/2022.01.19.476759.
  10. Dussouchaud, A.; Jacob, J.; Secq, C.; Verbavatz, J.-M.; Moras, M.; Larghero, J.; Fader, C. M.; Ostuni, M. A.; Lefevre, S. D. Transmission Electron Microscopy to Follow Ultrastructural Modifications of Erythroblasts Upon Ex Vivo Human Erythropoiesis. Front Physiol 2022, 12, 791691. doi: 10.3389/fphys.2021.791691. PMID: 35222062.
  11. Sonam, S.; Vigouroux, C.; Jégou, A.; Romet-Lemonne, G.; Le Clainche, C.; Ladoux, B.; Mège, R. M. Direct Measurement of Near-Nano-Newton Forces Developed by Self-Organizing Actomyosin Fibers Bound α-Catenin. Biol Cell 2021, 113 (11), 441–449. doi: 10.1111/boc.202100014. PMID: 34287982.
  12. Balasubramaniam, L.; Doostmohammadi, A.; Saw, T. B.; Narayana, G. H. N. S.; Mueller, R.; Dang, T.; Thomas, M.; Gupta, S.; Sonam, S.; Yap, A. S.; Toyama, Y.; Mège, R.-M.; Yeomans, J. M.; Ladoux, B. Investigating the Nature of Active Forces in Tissues Reveals How Contractile Cells Can Form Extensile Monolayers. Nat Mater 2021, 20 (8), 1156–1166. doi: 10.1038/s41563-021-00919-2. PMID: 33603188.
  13. d’Alessandro, J.; Barbier-Chebbah, A.; Cellerin, V.; Benichou, O.; Mège, R. M.; Voituriez, R.; Ladoux, B. Cell Migration Guided by Long-Lived Spatial Memory. Nat Commun 2021, 12 (1), 4118. doi: 10.1038/s41467-021-24249-8. PMID: 34226542.
  14. Sellis, D.; Guérin, F.; Arnaiz, O.; Pett, W.; Lerat, E.; Boggetto, N.; Krenek, S.; Berendonk, T.; Couloux, A.; Aury, J.-M.; Labadie, K.; Malinsky, S.; Bhullar, S.; Meyer, E.; Sperling, L.; Duret, L.; Duharcourt, S. Massive Colonization of Protein-Coding Exons by Selfish Genetic Elements in Paramecium Germline Genomes. PLoS Biol 2021, 19 (7), e3001309. doi: 10.1371/journal.pbio.3001309. PMID: 34324490.
  15. Bernard, F.; Jouette, J.; Durieu, C.; Le Borgne, R.; Guichet, A.; Claret, S. GFP-Tagged Protein Detection by Electron Microscopy Using a GBP-APEX Tool in Drosophila. Front Cell Dev Biol 2021, 9, 719582. doi: 10.3389/fcell.2021.719582. PMID: 34476234.
  16. Gonzalez Curto, G.; Der Vartanian, A.; Frarma, Y. E.-M.; Manceau, L.; Baldi, L.; Prisco, S.; Elarouci, N.; Causeret, F.; Korenkov, D.; Rigolet, M.; Aurade, F.; De Reynies, A.; Contremoulins, V.; Relaix, F.; Faklaris, O.; Briscoe, J.; Gilardi-Hebenstreit, P.; Ribes, V. The PAX-FOXO1s Trigger Fast Trans-Differentiation of Chick Embryonic Neural Cells into Alveolar Rhabdomyosarcoma with Tissue Invasive Properties Limited by S Phase Entry Inhibition. PLoS Genet 2020, 16 (11), e1009164. doi: 10.1371/journal.pgen.1009164. PMID: 33175861.
  17. Velez-Aguilera, G.; Nkombo Nkoula, S.; Ossareh-Nazari, B.; Link, J.; Paouneskou, D.; Van Hove, L.; Joly, N.; Tavernier, N.; Verbavatz, J.-M.; Jantsch, V.; Pintard, L. PLK-1 Promotes the Merger of the Parental Genome into a Single Nucleus by Triggering Lamina Disassembly. Elife 2020, 9, e59510. doi: 10.7554/eLife.59510. PMID: 33030429.
  18. Déjardin, T.; Carollo, P. S.; Sipieter, F.; Davidson, P. M.; Seiler, C.; Cuvelier, D.; Cadot, B.; Sykes, C.; Gomes, E. R.; Borghi, N. Nesprins Are Mechanotransducers That Discriminate Epithelial-Mesenchymal Transition Programs. J Cell Biol 2020, 219 (10), e201908036. doi: 10.1083/jcb.201908036. PMID: 32790861.
  19. Raich, N.; Contremoulins, V.; Karess, R. E. Immunostaining of Whole-Mount Drosophila Testes for 3D Confocal Analysis of Large Spermatocytes. J Vis Exp 2020, No. 162. doi: 10.3791/61061. PMID: 32925873.
  20. Jain, S.; Cachoux, V. M. L.; Narayana, G. H. N. S.; de Beco, S.; D’Alessandro, J.; Cellerin, V.; Chen, T.; Heuzé, M. L.; Marcq, P.; Mège, R.-M.; Kabla, A. J.; Lim, C. T.; Ladoux, B. The Role of Single Cell Mechanical Behavior and Polarity in Driving Collective Cell Migration. Nat Phys 2020, 16 (7), 802–809. doi: 10.1038/s41567-020-0875-z. PMID: 32641972.
  21. Botté, A.; Lainé, J.; Xicota, L.; Heiligenstein, X.; Fontaine, G.; Kasri, A.; Rivals, I.; Goh, P.; Faklaris, O.; Cossec, J.-C.; Morel, E.; Rebillat, A.-S.; Nizetic, D.; Raposo, G.; Potier, M.-C. Ultrastructural and Dynamic Studies of the Endosomal Compartment in Down Syndrome. Acta Neuropathol Commun 2020, 8 (1), 89. doi: 10.1186/s40478-020-00956-z. PMID: 32580751.
  22. Doss, B. L.; Pan, M.; Gupta, M.; Grenci, G.; Mège, R.-M.; Lim, C. T.; Sheetz, M. P.; Voituriez, R.; Ladoux, B. Cell Response to Substrate Rigidity Is Regulated by Active and Passive Cytoskeletal Stress. Proc Natl Acad Sci U S A 2020, 117 (23), 12817–12825. doi: 10.1073/pnas.1917555117. PMID: 32444491.
  23. Bidel, L. P. R.; Meyer, S.; Talhouët, A.-C.; Baudin, X.; Daniel, C.; Cazals, G.; Streb, P. Epidermal UVA Screening Capacity Measured in Situ as an Indicator of Light Acclimation State of Leaves of a Very Plastic Alpine Plant Soldanella Alpina L. Plant Physiol Biochem 2020, 151, 10–20. doi: 10.1016/j.plaphy.2020.02.045. PMID: 32179468.
  24. Plan Sangnier, A.; Van de Walle, A.; Aufaure, R.; Fradet, M.; Motte, L.; Guénin, E.; Lalatonne, Y.; Wilhelm, C. Endosomal Confinement of Gold Nanospheres, Nanorods, and Nanoraspberries Governs Their Photothermal Identity and Is Beneficial for Cancer Cell Therapy. Adv Biosyst 2020, 4 (4), e1900284. doi: 10.1002/adbi.201900284. PMID: 32293165.
  25. Talhouët, A.-C.; Meyer, S.; Baudin, X.; Streb, P. Dynamic Acclimation to Sunlight in an Alpine Plant, Soldanella Alpina L. Physiol Plant 2020, 168 (3), 563–575. doi: 10.1111/ppl.12982. PMID: 31090072.
  26. Dilsizoglu Senol, A.; Tagliafierro, L.; Gorisse-Hussonnois, L.; Rebeillard, F.; Huguet, L.; Geny, D.; Contremoulins, V.; Corlier, F.; Potier, M.-C.; Chasseigneaux, S.; Darmon, M.; Allinquant, B. Protein Interacting with Amyloid Precursor Protein Tail-1 (PAT1) Is Involved in Early Endocytosis. Cell Mol Life Sci 2019, 76 (24), 4995–5009. doi: 10.1007/s00018-019-03157-7. PMID: 31139847.
  27. Sanchez-Guzman, D.; Le Guen, P.; Villeret, B.; Sola, N.; Le Borgne, R.; Guyard, A.; Kemmel, A.; Crestani, B.; Sallenave, J.-M.; Garcia-Verdugo, I. Silver Nanoparticle-Adjuvanted Vaccine Protects against Lethal Influenza Infection through Inducing BALT and IgA-Mediated Mucosal Immunity. Biomaterials 2019, 217, 119308. doi: 10.1016/j.biomaterials.2019.119308. PMID: 31279103.
  28. Plan Sangnier, A.; Van de Walle, A. B.; Curcio, A.; Le Borgne, R.; Motte, L.; Lalatonne, Y.; Wilhelm, C. Impact of Magnetic Nanoparticle Surface Coating on Their Long-Term Intracellular Biodegradation in Stem Cells. Nanoscale 2019, 11 (35), 16488–16498. doi: 10.1039/c9nr05624f. PMID: 31453605.
  29. Heuzé, M. L.; Sankara Narayana, G. H. N.; D’Alessandro, J.; Cellerin, V.; Dang, T.; Williams, D. S.; Van Hest, J. C.; Marcq, P.; Mège, R.-M.; Ladoux, B. Myosin II Isoforms Play Distinct Roles in Adherens Junction Biogenesis. Elife 2019, 8, e46599. doi: 10.7554/eLife.46599. PMID: 31486768.
  30. Peyret, G.; Mueller, R.; d’Alessandro, J.; Begnaud, S.; Marcq, P.; Mège, R.-M.; Yeomans, J. M.; Doostmohammadi, A.; Ladoux, B. Sustained Oscillations of Epithelial Cell Sheets. Biophys J 2019, 117 (3), 464–478. doi: 10.1016/j.bpj.2019.06.013. PMID: 31307676.
  31. Nguyen, T.; Duchesne, L.; Sankara Narayana, G. H. N.; Boggetto, N.; Fernig, D. D.; Uttamrao Murade, C.; Ladoux, B.; Mège, R.-M. Enhanced Cell-Cell Contact Stability and Decreased N-Cadherin-Mediated Migration upon Fibroblast Growth Factor Receptor-N-Cadherin Cross Talk. Oncogene 2019, 38 (35), 6283–6300. doi: 10.1038/s41388-019-0875-6. PMID: 31312021.
  32. Duval, N.; Vaslin, C.; Barata, T. C.; Frarma, Y.; Contremoulins, V.; Baudin, X.; Nedelec, S.; Ribes, V. C. BMP4 Patterns Smad Activity and Generates Stereotyped Cell Fate Organization in Spinal Organoids. Development 2019, 146 (14), dev175430. doi: 10.1242/dev.175430. PMID: 31239243.
  33. Chevalier, N. R.; Dacher, N.; Jacques, C.; Langlois, L.; Guedj, C.; Faklaris, O. Embryogenesis of the Peristaltic Reflex. J Physiol 2019, 597 (10), 2785–2801. doi: 10.1113/JP277746. PMID: 30924929.
  34. Collot, M.; Ashokkumar, P.; Anton, H.; Boutant, E.; Faklaris, O.; Galli, T.; Mély, Y.; Danglot, L.; Klymchenko, A. S. MemBright: A Family of Fluorescent Membrane Probes for Advanced Cellular Imaging and Neuroscience. Cell Chem Biol 2019, 26 (4), 600-614.e7. doi: 10.1016/j.chembiol.2019.01.009. PMID: 30745238.
  35. Gauquelin, E.; Tlili, S.; Gay, C.; Peyret, G.; Mège, R.-M.; Fardin, M. A.; Ladoux, B. Influence of Proliferation on the Motions of Epithelial Monolayers Invading Adherent Strips. Soft Matter 2019, 15 (13), 2798–2810. doi: 10.1039/c9sm00105k. PMID: 30888391.
  36. Gupta, M.; Doss, B. L.; Kocgozlu, L.; Pan, M.; Mège, R.-M.; Callan-Jones, A.; Voituriez, R.; Ladoux, B. Cell Shape and Substrate Stiffness Drive Actin-Based Cell Polarity. Phys Rev E 2019, 99 (1–1), 012412. doi: 10.1103/PhysRevE.99.012412. PMID: 30780372.
  37. Walch, L.; Pellier, E.; Leng, W.; Lakisic, G.; Gautreau, A.; Contremoulins, V.; Verbavatz, J.-M.; Jackson, C. L. GBF1 and Arf1 Interact with Miro and Regulate Mitochondrial Positioning within Cells. Sci Rep 2018, 8 (1), 17121. doi: 10.1038/s41598-018-35190-0. PMID: 30459446.
  38. Fernandes, J.; Hamidi, F.; Leborgne, R.; Beau, R.; Castier, Y.; Mordant, P.; Boukkerou, A.; Latgé, J. P.; Pretolani, M. Penetration of the Human Pulmonary Epithelium by Aspergillus Fumigatus Hyphae. J Infect Dis 2018, 218 (8), 1306–1313. doi: 10.1093/infdis/jiy298. PMID: 29846638.
  39. Daste, F.; Sauvanet, C.; Bavdek, A.; Baye, J.; Pierre, F.; Le Borgne, R.; David, C.; Rojo, M.; Fuchs, P.; Tareste, D. The Heptad Repeat Domain 1 of Mitofusin Has Membrane Destabilization Function in Mitochondrial Fusion. EMBO Rep 2018, 19 (6), e43637. doi: 10.15252/embr.201643637. PMID: 29661855.
  40. Penrad-Mobayed, M.; Perrin, C.; L’Hôte, D.; Contremoulins, V.; Lepesant, J.-A.; Boizet-Bonhoure, B.; Poulat, F.; Baudin, X.; Veitia, R. A. A Role for SOX9 in Post-Transcriptional Processes: Insights from the Amphibian Oocyte. Sci Rep 2018, 8 (1), 7191. doi: 10.1038/s41598-018-25356-1. PMID: 29740094.
  41. Collot, M.; Fam, T. K.; Ashokkumar, P.; Faklaris, O.; Galli, T.; Danglot, L.; Klymchenko, A. S. Ultrabright and Fluorogenic Probes for Multicolor Imaging and Tracking of Lipid Droplets in Cells and Tissues. J Am Chem Soc 2018, 140 (16), 5401–5411. doi: 10.1021/jacs.7b12817. PMID: 29446627.
  42. Davì, V.; Tanimoto, H.; Ershov, D.; Haupt, A.; De Belly, H.; Le Borgne, R.; Couturier, E.; Boudaoud, A.; Minc, N. Mechanosensation Dynamically Coordinates Polar Growth and Cell Wall Assembly to Promote Cell Survival. Dev Cell 2018, 45 (2), 170-182.e7. doi: 10.1016/j.devcel.2018.03.022. PMID: 29689193.
  43. Gayrard, C.; Bernaudin, C.; Déjardin, T.; Seiler, C.; Borghi, N. Src- and Confinement-Dependent FAK Activation Causes E-Cadherin Relaxation and β-Catenin Activity. J Cell Biol 2018, 217 (3), 1063–1077. doi: 10.1083/jcb.201706013. PMID: 29311227.
  44. Villeret, B.; Dieu, A.; Straube, M.; Solhonne, B.; Miklavc, P.; Hamadi, S.; Le Borgne, R.; Mailleux, A.; Norel, X.; Aerts, J.; Diallo, D.; Rouzet, F.; Dietl, P.; Sallenave, J.-M.; Garcia-Verdugo, I. Silver Nanoparticles Impair Retinoic Acid-Inducible Gene I-Mediated Mitochondrial Antiviral Immunity by Blocking the Autophagic Flux in Lung Epithelial Cells. ACS Nano 2018, 12 (2), 1188–1202. doi: 10.1021/acsnano.7b06934. PMID: 29357226.
  45. Seddiki, R.; Narayana, G. H. N. S.; Strale, P.-O.; Balcioglu, H. E.; Peyret, G.; Yao, M.; Le, A. P.; Teck Lim, C.; Yan, J.; Ladoux, B.; Mège, R. M. Force-Dependent Binding of Vinculin to α-Catenin Regulates Cell-Cell Contact Stability and Collective Cell Behavior. Mol Biol Cell 2018, 29 (4), 380–388. doi: 10.1091/mbc.E17-04-0231. PMID: 29282282.
  46. Lagache, T.; Grassart, A.; Dallongeville, S.; Faklaris, O.; Sauvonnet, N.; Dufour, A.; Danglot, L.; Olivo-Marin, J.-C. Mapping Molecular Assemblies with Fluorescence Microscopy and Object-Based Spatial Statistics. Nat Commun 2018, 9 (1), 698. doi: 10.1038/s41467-018-03053-x. PMID: 29449608.
  47. Laband, K.; Le Borgne, R.; Edwards, F.; Stefanutti, M.; Canman, J. C.; Verbavatz, J.-M.; Dumont, J. Chromosome Segregation Occurs by Microtubule Pushing in Oocytes. Nat Commun 2017, 8 (1), 1499. doi: 10.1038/s41467-017-01539-8. PMID: 29133801.
  48. Sellés, J.; Penrad-Mobayed, M.; Guillaume, C.; Fuger, A.; Auvray, L.; Faklaris, O.; Montel, F. Nuclear Pore Complex Plasticity during Developmental Process as Revealed by Super-Resolution Microscopy. Sci Rep 2017, 7 (1), 14732. doi: 10.1038/s41598-017-15433-2. PMID: 29116248.
  49. Mousseau, F.; Puisney, C.; Mornet, S.; Borgne, R. L.; Vacher, A.; Airiau, M.; Baeza-Squiban, A.; Berret, J.-F. Supported Pulmonary Surfactant Bilayers on Silica Nanoparticles: Formulation, Stability and Impact on Lung Epithelial Cells. Nanoscale 2017, 9 (39), 14967–14978. doi: 10.1039/c7nr04574c. PMID: 28953277.
  50. Tissot, N.; Lepesant, J.-A.; Bernard, F.; Legent, K.; Bosveld, F.; Martin, C.; Faklaris, O.; Bellaïche, Y.; Coppey, M.; Guichet, A. Distinct Molecular Cues Ensure a Robust Microtubule-Dependent Nuclear Positioning in the Drosophila Oocyte. Nat Commun 2017, 8, 15168. doi: 10.1038/ncomms15168. PMID: 28447612.
  51. Guérin, F.; Arnaiz, O.; Boggetto, N.; Denby Wilkes, C.; Meyer, E.; Sperling, L.; Duharcourt, S. Flow Cytometry Sorting of Nuclei Enables the First Global Characterization of Paramecium Germline DNA and Transposable Elements. BMC Genomics 2017, 18 (1), 327. doi: 10.1186/s12864-017-3713-7. PMID: 28446146.
  52. Müller, A.; Neukam, M.; Ivanova, A.; Sönmez, A.; Münster, C.; Kretschmar, S.; Kalaidzidis, Y.; Kurth, T.; Verbavatz, J.-M.; Solimena, M. A Global Approach for Quantitative Super Resolution and Electron Microscopy on Cryo and Epoxy Sections Using Self-Labeling Protein Tags. Sci Rep 2017, 7 (1), 23. doi: 10.1038/s41598-017-00033-x. PMID: 28154417.
  53. Sarangi, B. R.; Gupta, M.; Doss, B. L.; Tissot, N.; Lam, F.; Mège, R.-M.; Borghi, N.; Ladoux, B. Coordination between Intra- and Extracellular Forces Regulates Focal Adhesion Dynamics. Nano Lett 2017, 17 (1), 399–406. doi: 10.1021/acs.nanolett.6b04364. PMID: 27990827.

 

PUBLICATIONS AVEC REMERCIEMENT DE LA PLATEFORME IMAGOSEINE (2017-2022)

 

  1. Berret, J.-F.; Graillot, A. Versatile Coating Platform for Metal Oxide Nanoparticles: Applications to Materials and Biological Science. Langmuir 2022, 38 (18), 5323–5338. doi: 10.1021/acs.langmuir.2c00338. PMID: 35483044.
  2. Velez-Aguilera, G.; Ossareh-Nazari, B.; Van Hove, L.; Joly, N.; Pintard, L. Cortical Microtubule Pulling Forces Contribute to the Union of the Parental Genomes in the Caenorhabditis Elegans Zygote. Elife 2022, 11, e75382. doi: 10.7554/eLife.75382. PMID: 35259092.
  3. Loh, M.; Dauvet, D.; Sanchez-Garrido, F.; Sadaouli, K.; Bernard, F.; Guichet, A. Kinesin-1 Promotes Centrosome Clustering and Nuclear Migration in the Drosophila Oocyte; preprint; Developmental Biology, 2022. doi: 10.1101/2022.02.16.480671.
  4. Brun, S.; Kuo, H.-C.; Jeffree, C. E.; Thomson, D. D.; Read, N. Courtship Ritual of Male and Female Nuclei during Fertilization in Neurospora Crassa. Microbiol Spectr 2021, 9 (2), e0033521. doi: 10.1128/Spectrum.00335-21. PMID: 34612669.
  5. Tovey, C. A.; Tsuji, C.; Egerton, A.; Bernard, F.; Guichet, A.; de la Roche, M.; Conduit, P. T. Autoinhibition of Cnn Binding to γ-TuRCs Prevents Ectopic Microtubule Nucleation and Cell Division Defects. J Cell Biol 2021, 220 (8), e202010020. doi: 10.1083/jcb.202010020. PMID: 34042945.
  6. Gemin, O.; Serna, P.; Zamith, J.; Assendorp, N.; Fossati, M.; Rostaing, P.; Triller, A.; Charrier, C. Unique Properties of Dually Innervated Dendritic Spines in Pyramidal Neurons of the Somatosensory Cortex Uncovered by 3D Correlative Light and Electron Microscopy. PLoS Biol 2021, 19 (8), e3001375. doi: 10.1371/journal.pbio.3001375. PMID: 34428203.
  7. Chevalier, N. R.; Ammouche, Y.; Gomis, A.; Langlois, L.; Guilbert, T.; Bourdoncle, P.; Dufour, S. A Neural Crest Cell Isotropic-to-Nematic Phase Transition in the Developing Mammalian Gut. Commun Biol 2021, 4 (1), 770. doi: 10.1038/s42003-021-02333-5. PMID: 34162999.
  8. Gonzalez-Estevez, A.; Verrico, A.; Orniacki, C.; Reina-San-Martin, B.; Doye, V. Integrity of the Short Arm of the Nuclear Pore Y-Complex Is Required for Mouse Embryonic Stem Cell Growth and Differentiation. J Cell Sci 2021, 134 (10), jcs258340. doi: 10.1242/jcs.258340. PMID: 34037234.
  9. Giménez-Andrés, M.; Emeršič, T.; Antoine-Bally, S.; D’Ambrosio, J. M.; Antonny, B.; Derganc, J.; Čopič, A. Exceptional Stability of a Perilipin on Lipid Droplets Depends on Its Polar Residues, Suggesting Multimeric Assembly. Elife 2021, 10, e61401. doi: 10.7554/eLife.61401. PMID: 33856341.
  10. Gaston, C.; De Beco, S.; Doss, B.; Pan, M.; Gauquelin, E.; D’Alessandro, J.; Lim, C. T.; Ladoux, B.; Delacour, D. EpCAM Promotes Endosomal Modulation of the Cortical RhoA Zone for Epithelial Organization. Nat Commun 2021, 12 (1), 2226. doi: 10.1038/s41467-021-22482-9. PMID: 33850145.
  11. Chevalier, N. R.; Agbesi, R. J. A.; Ammouche, Y.; Dufour, S. How Smooth Muscle Contractions Shape the Developing Enteric Nervous System. Front Cell Dev Biol 2021, 9, 678975. doi: 10.3389/fcell.2021.678975. PMID: 34150774.
  12. Canever, H.; Carollo, P. S.; Fleurisson, R.; Girard, P. P.; Borghi, N. Molecular Tension Microscopy of E-Cadherin During Epithelial-Mesenchymal Transition. Methods Mol Biol 2021, 2179, 289–299. doi: 10.1007/978-1-0716-0779-4_22. PMID: 32939728.
  13. Brossas, C.; Valton, A.-L.; Venev, S. V.; Chilaka, S.; Counillon, A.; Laurent, M.; Goncalves, C.; Duriez, B.; Picard, F.; Dekker, J.; Prioleau, M.-N. Clustering of Strong Replicators Associated with Active Promoters Is Sufficient to Establish an Early-Replicating Domain. EMBO J 2020, 39 (21), e99520. doi: 10.15252/embj.201899520. PMID: 32935369.
  14. Mukherjee, R. N.; Sallé, J.; Dmitrieff, S.; Nelson, K. M.; Oakey, J.; Minc, N.; Levy, D. L. The Perinuclear ER Scales Nuclear Size Independently of Cell Size in Early Embryos. Dev Cell 2020, 54 (3), 395-409.e7. doi: 10.1016/j.devcel.2020.05.003. PMID: 32473090.
  15. Bruzzone, L.; Argüelles, C.; Sanial, M.; Miled, S.; Alvisi, G.; Gonçalves-Antunes, M.; Qasrawi, F.; Holmgren, R. A.; Smibert, C. A.; Lipshitz, H. D.; Boccaccio, G. L.; Plessis, A.; Bécam, I. Regulation of the RNA-Binding Protein Smaug by the GPCR Smoothened via the Kinase Fused. EMBO Rep 2020, 21 (7), e48425. doi: 10.15252/embr.201948425. PMID: 32383557.
  16. de Vanssay, A.; Touzeau, A.; Arnaiz, O.; Frapporti, A.; Phipps, J.; Duharcourt, S. The Paramecium Histone Chaperone Spt16-1 Is Required for Pgm Endonuclease Function in Programmed Genome Rearrangements. PLoS Genet 2020, 16 (7), e1008949. doi: 10.1371/journal.pgen.1008949. PMID: 32702045.
  17. D’Ambrosio, J. M.; Albanèse, V.; Lipp, N.-F.; Fleuriot, L.; Debayle, D.; Drin, G.; Čopič, A. Osh6 Requires Ist2 for Localization to ER-PM Contacts and Efficient Phosphatidylserine Transport in Budding Yeast. J Cell Sci 2020, 133 (11), jcs243733. doi: 10.1242/jcs.243733. PMID: 32327560.
  18. Joly, N.; Beaumale, E.; Van Hove, L.; Martino, L.; Pintard, L. Phosphorylation of the Microtubule-Severing AAA+ Enzyme Katanin Regulates C. Elegans Embryo Development. J Cell Biol 2020, 219 (6), e201912037. doi: 10.1083/jcb.201912037. PMID: 32412594.
  19. Coppin, L.; Jannin, A.; Ait Yahya, E.; Thuillier, C.; Villenet, C.; Tardivel, M.; Bongiovanni, A.; Gaston, C.; de Beco, S.; Barois, N.; van Seuningen, I.; Durand, E.; Bonnefond, A.; Vienne, J.-C.; Vamecq, J.; Figeac, M.; Vincent, A.; Delacour, D.; Porchet, N.; Pigny, P. Galectin-3 Modulates Epithelial Cell Adaptation to Stress at the ER-Mitochondria Interface. Cell Death Dis 2020, 11 (5), 360. doi: 10.1038/s41419-020-2556-3. PMID: 32398681.
  20. Borne, F.; Kovalev, A.; Gorb, S.; Courtier-Orgogozo, V. The Glue Produced by Drosophila Melanogaster for Pupa Adhesion Is Universal. J Exp Biol 2020, 223 (Pt 8), jeb220608. doi: 10.1242/jeb.220608. PMID: 32165432.
  21. Thai, L.-P.-A.; Mousseau, F.; Oikonomou, E.; Radiom, M.; Berret, J.-F. Effect of Nanoparticles on the Bulk Shear Viscosity of a Lung Surfactant Fluid. ACS Nano 2020, 14 (1), 466–475. doi: 10.1021/acsnano.9b06293. PMID: 31854968.
  22. Pizon, V.; Gaudin, N.; Poteau, M.; Cifuentes-Diaz, C.; Demdou, R.; Heyer, V.; Reina San Martin, B.; Azimzadeh, J. HVFL3/CCDC61 Is a Component of Mother Centriole Subdistal Appendages Required for Centrosome Cohesion and Positioning. Biol Cell 2020, 112 (1), 22–37. doi: 10.1111/boc.201900038. PMID: 31789463.
  23. Casanova, M.; Moscatelli, M.; Chauvière, L. É.; Huret, C.; Samson, J.; Liyakat Ali, T. M.; Rosspopoff, O.; Rougeulle, C. A Primate-Specific Retroviral Enhancer Wires the XACT LncRNA into the Core Pluripotency Network in Humans. Nat Commun 2019, 10 (1), 5652. doi: 10.1038/s41467-019-13551-1. PMID: 31827084.
  24. Basquin, C.; Ershov, D.; Gaudin, N.; Vu, H. T.-K.; Louis, B.; Papon, J.-F.; Orfila, A.-M.; Mansour, S.; Rink, J. C.; Azimzadeh, J. Emergence of a Bilaterally Symmetric Pattern from Chiral Components in the Planarian Epidermis. Dev Cell 2019, 51 (4), 516-525.e5. doi: 10.1016/j.devcel.2019.10.021. PMID: 31743665.
  25. Mercier, A.; Clairet, C.; Debuchy, R.; Morais, D.; Silar, P.; Brun, S. The Mitochondrial Translocase of the Inner Membrane PaTim54 Is Involved in Defense Response and Longevity in Podospora Anserina. Fungal Genet Biol 2019, 132, 103257. doi: 10.1016/j.fgb.2019.103257. PMID: 31351193.
  26. Antunes, J. C.; Benarroch, L.; Moraes, F. C.; Juenet, M.; Gross, M.-S.; Aubart, M.; Boileau, C.; Caligiuri, G.; Nicoletti, A.; Ollivier, V.; Chaubet, F.; Letourneur, D.; Chauvierre, C. Core-Shell Polymer-Based Nanoparticles Deliver MiR-155-5p to Endothelial Cells. Mol Ther Nucleic Acids 2019, 17, 210–222. doi: 10.1016/j.omtn.2019.05.016. PMID: 31265949.
  27. Lipp, N.-F.; Gautier, R.; Magdeleine, M.; Renard, M.; Albanèse, V.; Čopič, A.; Drin, G. An Electrostatic Switching Mechanism to Control the Lipid Transfer Activity of Osh6p. Nat Commun 2019, 10 (1), 3926. doi: 10.1038/s41467-019-11780-y. PMID: 31477717.
  28. Demoor, A.; Silar, P.; Brun, S. Appressorium: The Breakthrough in Dikarya. J Fungi (Basel) 2019, 5 (3), E72. doi: 10.3390/jof5030072. PMID: 31382649.
  29. Davì, V.; Chevalier, L.; Guo, H.; Tanimoto, H.; Barrett, K.; Couturier, E.; Boudaoud, A.; Minc, N. Systematic Mapping of Cell Wall Mechanics in the Regulation of Cell Morphogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A 2019, 116 (28), 13833–13838. doi: 10.1073/pnas.1820455116. PMID: 31235592.
  30. Mousseau, F.; Berret, J.-F.; Oikonomou, E. K. Design and Applications of a Fluorescent Labeling Technique for Lipid and Surfactant Preformed Vesicles. ACS Omega 2019, 4 (6), 10485–10493. doi: 10.1021/acsomega.9b01094. PMID: 31460145.
  31. Frapporti, A.; Miró Pina, C.; Arnaiz, O.; Holoch, D.; Kawaguchi, T.; Humbert, A.; Eleftheriou, E.; Lombard, B.; Loew, D.; Sperling, L.; Guitot, K.; Margueron, R.; Duharcourt, S. The Polycomb Protein Ezl1 Mediates H3K9 and H3K27 Methylation to Repress Transposable Elements in Paramecium. Nat Commun 2019, 10 (1), 2710. doi: 10.1038/s41467-019-10648-5. PMID: 31221974.
  32. Duriez, B.; Chilaka, S.; Bercher, J.-F.; Hercul, E.; Prioleau, M.-N. Replication Dynamics of Individual Loci in Single Living Cells Reveal Changes in the Degree of Replication Stochasticity through S Phase. Nucleic Acids Res 2019, 47 (10), 5155–5169. doi: 10.1093/nar/gkz220. PMID: 30926993.
  33. Thai, L. P. A.; Mousseau, F.; Oikonomou, E. K.; Berret, J.-F. On the Rheology of Pulmonary Surfactant: Effects of Concentration and Consequences for the Surfactant Replacement Therapy. Colloids Surf B Biointerfaces 2019, 178, 337–345. doi: 10.1016/j.colsurfb.2019.03.020. PMID: 30897431.
  34. Chen, T.; Callan-Jones, A.; Fedorov, E.; Ravasio, A.; Brugués, A.; Ong, H. T.; Toyama, Y.; Low, B. C.; Trepat, X.; Shemesh, T.; Voituriez, R.; Ladoux, B. Large-Scale Curvature Sensing by Directional Actin Flow Drives Cellular Migration Mode Switching. Nat Phys 2019, 15, 393–402. doi: 10.1038/s41567-018-0383-6. PMID: 30984281.
  35. Baldim, V.; Bia, N.; Graillot, A.; Loubat, C.; Berret, J. Monophosphonic versus Multiphosphonic Acid Based PEGylated Polymers for Functionalization and Stabilization of Metal (Ce, Fe, Ti, Al) Oxide Nanoparticles in Biological Media. Adv. Mater. Interfaces 2019, 6 (7), 1801814. doi: 10.1002/admi.201801814.
  36. Cianciolo Cosentino, C.; Berto, A.; Pelletier, S.; Hari, M.; Loffing, J.; Neuhauss, S. C. F.; Doye, V. Moderate Nucleoporin 133 Deficiency Leads to Glomerular Damage in Zebrafish. Sci Rep 2019, 9 (1), 4750. doi: 10.1038/s41598-019-41202-4. PMID: 30894603.
  37. Van de Walle, A.; Plan Sangnier, A.; Abou-Hassan, A.; Curcio, A.; Hémadi, M.; Menguy, N.; Lalatonne, Y.; Luciani, N.; Wilhelm, C. Biosynthesis of Magnetic Nanoparticles from Nano-Degradation Products Revealed in Human Stem Cells. Proc Natl Acad Sci U S A 2019, 116 (10), 4044–4053. doi: 10.1073/pnas.1816792116. PMID: 30760598.
  38. Sallé, J.; Xie, J.; Ershov, D.; Lacassin, M.; Dmitrieff, S.; Minc, N. Asymmetric Division through a Reduction of Microtubule Centering Forces. J Cell Biol 2019, 218 (3), 771–782. doi: 10.1083/jcb.201807102. PMID: 30563876.
  39. Jouette, J.; Guichet, A.; Claret, S. B. Dynein-Mediated Transport and Membrane Trafficking Control PAR3 Polarised Distribution. Elife 2019, 8, e40212. doi: 10.7554/eLife.40212. PMID: 30672465.
  40. Planques, A.; Malem, J.; Parapar, J.; Vervoort, M.; Gazave, E. Morphological, Cellular and Molecular Characterization of Posterior Regeneration in the Marine Annelid Platynereis Dumerilii. Dev Biol 2019, 445 (2), 189–210. doi: 10.1016/j.ydbio.2018.11.004. PMID: 30445055.
  41. D’Ambrosio, J. M.; Albanèse, V.; Čopič, A. Following Anterograde Transport of Phosphatidylserine in Yeast in Real Time. Methods Mol Biol 2019, 1949, 35–46. doi: 10.1007/978-1-4939-9136-5_4. PMID: 30790247.
  42. Piquet, S.; Le Parc, F.; Bai, S.-K.; Chevallier, O.; Adam, S.; Polo, S. E. The Histone Chaperone FACT Coordinates H2A.X-Dependent Signaling and Repair of DNA Damage. Mol Cell 2018, 72 (5), 888-901.e7. doi: 10.1016/j.molcel.2018.09.010. PMID: 30344095.
  43. De Pascalis, C.; Pérez-González, C.; Seetharaman, S.; Boëda, B.; Vianay, B.; Burute, M.; Leduc, C.; Borghi, N.; Trepat, X.; Etienne-Manneville, S. Intermediate Filaments Control Collective Migration by Restricting Traction Forces and Sustaining Cell-Cell Contacts. J Cell Biol 2018, 217 (9), 3031–3044. doi: 10.1083/jcb.201801162. PMID: 29980627.
  44. Plan Sangnier, A.; Preveral, S.; Curcio, A.; K A Silva, A.; Lefèvre, C. T.; Pignol, D.; Lalatonne, Y.; Wilhelm, C. Targeted Thermal Therapy with Genetically Engineered Magnetite Magnetosomes@RGD: Photothermia Is Far More Efficient than Magnetic Hyperthermia. J Control Release 2018, 279, 271–281. doi: 10.1016/j.jconrel.2018.04.036. PMID: 29684497.
  45. Souquet, B.; Freed, E.; Berto, A.; Andric, V.; Audugé, N.; Reina-San-Martin, B.; Lacy, E.; Doye, V. Nup133 Is Required for Proper Nuclear Pore Basket Assembly and Dynamics in Embryonic Stem Cells. Cell Rep 2018, 23 (8), 2443–2454. doi: 10.1016/j.celrep.2018.04.070. PMID: 29791854.
  46. Lacroix, B.; Letort, G.; Pitayu, L.; Sallé, J.; Stefanutti, M.; Maton, G.; Ladouceur, A.-M.; Canman, J. C.; Maddox, P. S.; Maddox, A. S.; Minc, N.; Nédélec, F.; Dumont, J. Microtubule Dynamics Scale with Cell Size to Set Spindle Length and Assembly Timing. Dev Cell 2018, 45 (4), 496-511.e6. doi: 10.1016/j.devcel.2018.04.022. PMID: 29787710.
  47. Berto, A.; Yu, J.; Morchoisne-Bolhy, S.; Bertipaglia, C.; Vallee, R.; Dumont, J.; Ochsenbein, F.; Guerois, R.; Doye, V. Disentangling the Molecular Determinants for Cenp-F Localization to Nuclear Pores and Kinetochores. EMBO Rep 2018, 19 (5), e44742. doi: 10.15252/embr.201744742. PMID: 29632243.
  48. Čopič, A.; Antoine-Bally, S.; Giménez-Andrés, M.; La Torre Garay, C.; Antonny, B.; Manni, M. M.; Pagnotta, S.; Guihot, J.; Jackson, C. L. A Giant Amphipathic Helix from a Perilipin That Is Adapted for Coating Lipid Droplets. Nat Commun 2018, 9 (1), 1332. doi: 10.1038/s41467-018-03717-8. PMID: 29626194.
  49. Plan Sangnier, A.; Aufaure, R.; Motte, L.; Wilhelm, C.; Guenin, E.; Lalatonne, Y. Hybrid Au@alendronate Nanoparticles as Dual Chemo-Photothermal Agent for Combined Cancer Treatment. Beilstein J Nanotechnol 2018, 9, 2947–2952. doi: 10.3762/bjnano.9.273. PMID: 30546991.
  50. Le Blay, K.; Préau, L.; Morvan-Dubois, G.; Demeneix, B. Expression of the Inactivating Deiodinase, Deiodinase 3, in the Pre-Metamorphic Tadpole Retina. PLoS One 2018, 13 (4), e0195374. doi: 10.1371/journal.pone.0195374. PMID: 29641587.
  51. Hadjadj, D.; Kim, S.-J.; Denecker, T.; Ben Driss, L.; Cadoret, J.-C.; Maric, C.; Baldacci, G.; Fauchereau, F. A Hypothesis-Driven Approach Identifies CDK4 and CDK6 Inhibitors as Candidate Drugs for Treatments of Adrenocortical Carcinomas. Aging (Albany NY) 2017, 9 (12), 2695–2716. doi: 10.18632/aging.101356. PMID: 29283884.
  52. Özpolat, B. D.; Handberg-Thorsager, M.; Vervoort, M.; Balavoine, G. Cell Lineage and Cell Cycling Analyses of the 4d Micromere Using Live Imaging in the Marine Annelid Platynereis Dumerilii. Elife 2017, 6, e30463. doi: 10.7554/eLife.30463. PMID: 29231816.
  53. Advedissian, T.; Proux-Gillardeaux, V.; Nkosi, R.; Peyret, G.; Nguyen, T.; Poirier, F.; Viguier, M.; Deshayes, F. E-Cadherin Dynamics Is Regulated by Galectin-7 at Epithelial Cell Surface. Sci Rep 2017, 7 (1), 17086. doi: 10.1038/s41598-017-17332-y. PMID: 29213102.
  54. Gard, C.; Gonzalez Curto, G.; Frarma, Y. E.-M.; Chollet, E.; Duval, N.; Auzié, V.; Auradé, F.; Vigier, L.; Relaix, F.; Pierani, A.; Causeret, F.; Ribes, V. Pax3- and Pax7-Mediated Dbx1 Regulation Orchestrates the Patterning of Intermediate Spinal Interneurons. Dev Biol 2017, 432 (1), 24–33. doi: 10.1016/j.ydbio.2017.06.014. PMID: 28625870.
  55. Martino, L.; Morchoisne-Bolhy, S.; Cheerambathur, D. K.; Van Hove, L.; Dumont, J.; Joly, N.; Desai, A.; Doye, V.; Pintard, L. Channel Nucleoporins Recruit PLK-1 to Nuclear Pore Complexes to Direct Nuclear Envelope Breakdown in C. Elegans. Dev Cell 2017, 43 (2), 157-171.e7. doi: 10.1016/j.devcel.2017.09.019. PMID: 29065307.
  56. Sanial, M.; Bécam, I.; Hofmann, L.; Behague, J.; Argüelles, C.; Gourhand, V.; Bruzzone, L.; Holmgren, R. A.; Plessis, A. Dose-Dependent Transduction of Hedgehog Relies on Phosphorylation-Based Feedback between the G-Protein-Coupled Receptor Smoothened and the Kinase Fused. Development 2017, 144 (10), 1841–1850. doi: 10.1242/dev.144782. PMID: 28360132.
  57. White, P. M.; Serbus, L. R.; Debec, A.; Codina, A.; Bray, W.; Guichet, A.; Lokey, R. S.; Sullivan, W. Reliance of Wolbachia on High Rates of Host Proteolysis Revealed by a Genome-Wide RNAi Screen of Drosophila Cells. Genetics 2017, 205 (4), 1473–1488. doi: 10.1534/genetics.116.198903. PMID: 28159754.
  58. Gazave, E.; Lemaître, Q. I. B.; Balavoine, G. The Notch Pathway in the Annelid Platynereis: Insights into Chaetogenesis and Neurogenesis Processes. Open Biol 2017, 7 (2), 160242. doi: 10.1098/rsob.160242. PMID: 28148821.
  59. Salomon, J.; Gaston, C.; Magescas, J.; Duvauchelle, B.; Canioni, D.; Sengmanivong, L.; Mayeux, A.; Michaux, G.; Campeotto, F.; Lemale, J.; Viala, J.; Poirier, F.; Minc, N.; Schmitz, J.; Brousse, N.; Ladoux, B.; Goulet, O.; Delacour, D. Contractile Forces at Tricellular Contacts Modulate Epithelial Organization and Monolayer Integrity. Nat Commun 2017, 8, 13998. doi: 10.1038/ncomms13998. PMID: 28084299.
  60. Haupt, A.; Minc, N. Gradients of Phosphatidylserine Contribute to Plasma Membrane Charge Localization and Cell Polarity in Fission Yeast. Mol Biol Cell 2017, 28 (1), 210–220. doi: 10.1091/mbc.E16-06-0353. PMID: 27852900.
  61. Moriceau, L.; Jomat, L.; Bressanelli, S.; Alcaide-Loridan, C.; Jupin, I. Identification and Molecular Characterization of the Chloroplast Targeting Domain of Turnip Yellow Mosaic Virus Replication Proteins. Front Plant Sci 2017, 8, 2138. doi: 10.3389/fpls.2017.02138. PMID: 29312393.

Actualités

Octobre 2022 : Nouveau confocal à balayage LSM980 Airyscan2 et module deux-photon disponible en pièce RH26B.
Confocal de dernière génération Zeiss, équipé pour les expériences en vivant, permettant la séparation spectrale simultanée ainsi que les expérience de FRAP. Le module Airyscan 4Y permet une augmentation de 50% de la résolution par rapport à un confocal classique et une augmentation de la vitesse d’acquisition. Le module de microscopie à deux photon permet l’observation plus en profondeur des échantillons.

Septembre 2022 : Nouveau système de microscopie en Super-Résolution ELYRA7 en pièce RH22B.
Microscope permettant les expérience de PALM et dSTORM pour une précision de localisation jusqu’à 20nm.  Des expérience Lattice SIM permettant une augmentation de résolution 3D de deux fois par rapport à la limite théorique et compatible avec le vivant. Ainsi que le TIRF pour observer les évènements au niveau de l’interface membrane cellulaire et son substrat.

Juin 2022 : Nouveau module de FLIM et FCS Picoquant sur le confocal LSM980 en pièce RH20B1.
La technique de FLIM permet d’étudier la durée de vie de fluorescence dans l’échantillon ce qui renseigne sur son état biologique ainsi que les interaction entre protéines par la technique de FLIM-FRET. Les techniques de FCS permettent l’étude de la mobilité des molécules fluorescentes.

Septembre 2021 : Mise à jour du spinning Disk CSU X1 FRAP et Photoablation UV en pièce RH20B9.
Le spininng disk X1 FRAP dispose d’un nouveau banc laser (405nm, 445nm, 488nm, 561nm, 642nm) ainsi que la possibilité de faire du FRAP avec les 5 lasers et de la photo-ablation par UV pulsé.